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      上海那艾實驗儀器有限公司

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      微生物限度檢驗(薄膜過濾法)驗證詳解

      返回列表 瀏覽:218 日期:2020-04-18

      微生物限度檢查包含定量和定性評估,定量指需氧菌和霉菌酵母菌總數(shù),定性則指不得含控制菌。常用方法包括常規(guī)法、靜置上清液法、培養(yǎng)基稀釋法等,其中薄膜過濾法和平皿法常用于微生物回收和計數(shù)。

      中國、美國和歐洲藥典均有微生物限度標(biāo)準(zhǔn),但具體限度有所不同,分別針對不同類別產(chǎn)品制定??傊⑸锵薅仁谴_保產(chǎn)品質(zhì)量和安全的關(guān)鍵指標(biāo),通過嚴(yán)格檢測和控制可有效預(yù)防微生物污染風(fēng)險。

      主要針對微生物限度檢驗(薄膜過濾法)菌液的稀釋與制備、微生物計數(shù)方法學(xué)驗證、控制菌驗證及再驗證等展開介紹。

      驗證用菌株及菌種要求

      驗證用菌株 大腸埃希菌、金黃色葡萄球菌和枯草芽孢桿菌、銅綠假單孢菌作為細(xì)菌計數(shù)驗證用菌株,需確保生物學(xué)特性穩(wěn)定,傳代次數(shù)不超過5代。

      菌種保藏技術(shù) 為確保試驗菌株的生物學(xué)特性,應(yīng)采用適宜的菌種保藏技術(shù),如冷凍干燥或液氮冷凍等,并嚴(yán)格控制傳代次數(shù)。

      霉菌及酵母菌驗證 黑曲霉和白色念珠菌作為霉菌及酵母菌計數(shù)驗證用菌株,同樣需遵循生物學(xué)特性,并應(yīng)用合適的保藏技術(shù)。

      需氧菌菌液制備及稀釋

      細(xì)菌菌液培養(yǎng) 大腸埃希菌、金黃色葡萄球菌、枯草芽孢桿菌、銅綠假單孢菌菌液制備,接種至10ml胰酪大豆胨液體培養(yǎng)基,30~35℃培養(yǎng)18~24小時。

      細(xì)菌稀釋 取各個細(xì)菌培養(yǎng)液1ml分別加入pH7.0無菌氯化鈉-蛋白胨緩沖液9ml,采用10倍遞增稀釋法,稀釋至10^-6~10^-7(具體稀釋級需要進(jìn)行驗證),制成每1ml含菌數(shù)50~100cfu的菌懸液。

      霉菌及酵母菌菌液制備

      白色念珠菌培養(yǎng)及稀釋 接種白色念珠菌的新鮮培養(yǎng)物至10ml沙氏葡萄糖液體培養(yǎng)基中,20~25℃培養(yǎng) 24~48小時;取此培養(yǎng)液1ml加 pH7.0無菌氯化鈉-蛋白胨緩沖液 9ml。采用10倍遞增稀釋法,稀釋至10-6~10-7,制成每1ml含菌數(shù) 50~100cfu的菌懸液

      黑曲霉孢子懸液制備 加入3~5ml 含0.05%吐溫80的0.9%無菌氯化鈉溶液,將孢子洗脫,使用渦旋儀將洗脫液進(jìn)行混勻。準(zhǔn)備一個無菌注射器內(nèi)部塞入無菌棉球,再將洗脫液進(jìn)行過濾,過濾好的菌懸液取1ml加0.9%無菌氯化鈉溶液9ml,采用10倍遞增稀釋法。稀釋至10-4~10-6,制成每1ml含孢子數(shù)50~100cfu的孢子懸液,為確保試驗的準(zhǔn)確性,所有菌液和孢子懸液的制備均需嚴(yán)格遵守?zé)o菌操作規(guī)程。

      黑曲霉孢子懸液制作注意事項

      1. 黑曲霉孢子容易污染潔凈環(huán)境,在進(jìn)行黑曲霉孢子懸液制備時建議關(guān)閉生物安全柜風(fēng)機(jī),防止孢子擴(kuò)散。

      2. 菌絲去除:確保去除菌絲,否則會影響后續(xù)實驗。

      微生物計數(shù)方法學(xué)驗證

      供試液的制備

      無抑菌活性供試品 稀釋劑為pH7.0無菌氯化鈉-蛋白胨緩沖液,液體供試品需與稀釋劑按1:10比例混合均勻,固體、半固體、粘稠性供試品則按1:10比例混合稀釋劑。

      培養(yǎng)基稀釋法 取供試液2ml,每0.2ml的供試液注一皿或每0.1ml的供試液注一皿;或取供試液1ml每0.5ml的供試液注一皿,傾注15ml的培養(yǎng)基,測定細(xì)菌、霉菌及酵母菌的菌數(shù)。

      離心沉淀集菌法 取一定量的供試液,3000轉(zhuǎn)/分離心20分鐘(供試液如有沉淀,先以500轉(zhuǎn)/分鐘離心5分鐘,取全部上清液再離心),棄去上清液,留底部集菌液約2ml,加稀釋液補(bǔ)至原量。

      薄膜過濾法 取規(guī)定量試驗可能用的最低稀釋級供試液,過濾,沖洗,按薄膜過濾法測定其菌落數(shù),選取適宜的中和劑如磺胺類藥物加入適當(dāng)?shù)膶Π被郊姿?,含重金屬的藥物在培養(yǎng)基內(nèi)加入巰基化合物。

      試驗組檢測方法(無抑菌活性供試品為例)

      無菌濾杯中,再加入1ml不大于100cfu的菌懸液過濾。最后再用300ml pH7.0氯化鈉-蛋白胨緩沖液沖洗濾膜(每次100ml,沖3次)。過濾結(jié)束后,接種金黃色葡萄球菌,銅綠假單胞菌,枯草芽孢桿菌的濾膜貼在胰酪大豆胨瓊脂培養(yǎng)基(TSA)上,平行制備兩份。接種白色念珠菌和黑曲霉的濾膜貼在2個胰酪大豆胨瓊脂培養(yǎng)基(TSA)上和2個沙氏葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基(SDA)上。

      菌液組檢測方法(無抑菌活性供試品為例)

      取pH7.0氯化鈉-蛋白胨緩沖液10ml加入準(zhǔn)備好濾膜的無菌濾杯中,再加入1ml不大于100cfu的菌懸液過濾。最后再用300ml pH7.0氯化鈉-蛋白胨緩沖液沖洗濾膜(每次100ml,沖3次)。過濾結(jié)束后,接種金黃色葡萄球菌,銅綠假單胞菌,枯草芽孢桿菌的濾膜貼在胰酪大豆胨瓊脂培養(yǎng)基(TSA)上,平行制備兩份。接種白色念珠菌和黑曲霉的濾膜貼在2個胰酪大豆胨瓊脂培養(yǎng)基(TSA)上和2個沙氏葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基(SDA)上。

      供試品對照組及稀釋級對照組檢測方法(無抑菌活性供試品為例)

      供試品對照組 取10ml供試液過濾,再用300mlpH7.0氯化鈉-蛋白胨緩沖液(每次100ml,沖3次),不加試驗菌,操作同試驗組,測供試品本底數(shù)。

      稀釋劑對照組(陰性對照) 用pH7.0氯化鈉-蛋白胨緩沖液10ml替代供試液,操作同試驗組。

      培養(yǎng)和計數(shù) 含有銅綠假單胞菌、金黃色葡萄球菌、枯草芽孢桿菌的胰酪大豆胨瓊脂培養(yǎng)基(TSA)平板倒置于30~35℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3~5天;含白色念珠菌、黑曲霉的胰酪大豆胨瓊脂培養(yǎng)基平板(TSA)倒置于20~25℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)5~7天;含白色念珠菌、黑曲霉的沙氏葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基(SDA)平板倒置于20~25℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)5~7天;供試品對照組中胰酪大豆胨瓊脂培養(yǎng)基平板倒置于30~35℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2天,觀察結(jié)果后,延長培養(yǎng)至3 天;供試品對照組中沙氏葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基平板倒置于20~25℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3天。 觀察菌落生長情況,點計菌落數(shù)。菌落蔓延生長成片的平板不宜計數(shù)。

      點計菌落數(shù)后,計算平均菌落數(shù),按菌數(shù)報告規(guī)則報告菌數(shù)。若同稀釋級別兩個平板的菌落平均數(shù)不小于15,則兩個平板的菌落數(shù)不能相差1倍或以上。

      試驗組回收率計算 回收率計算試驗組回收率計算的關(guān)鍵在于明確試驗組與對照組的菌落數(shù)關(guān)系,確保數(shù)據(jù)準(zhǔn)確;通過回收率驗證,確保試驗方法的可靠性和準(zhǔn)確性,為藥品微生物限度檢驗提供有力支持。

      計數(shù)方法驗證結(jié)果菌回收率計算公式:試驗組的菌回收率在(0.5~2.0),照該供試液制備方法和計數(shù)法測定供試品的需氧菌、 霉菌及酵母菌數(shù);若任一次試驗中試驗組的菌回收率不在(0.5~2.0)范圍內(nèi),應(yīng)采用 其他方法消除供試品的抑菌活性,并重新進(jìn)行方法驗證。方法適用性確認(rèn)時,若采用的上述方法還存在一株或多株試驗菌的回收率達(dá)不到要求,那么選擇最接近要求的方法和試驗條件進(jìn)行供試品的檢查。

      控制菌驗證

      驗證菌株信息

      大腸埃希菌(Esherichia coli)【CMCC(B) 44102】

      金黃色葡萄球菌( Staphylococcus)【CMCC(B)26003】

      乙型付傷寒沙門菌(Salmonella paratyphi B)【CMCC(B) 50094】

      銅綠假單胞菌(Pseudomonas aeruginosa)【CMCC (B) 10104】

      菌株保藏要求 驗證實驗所用的菌株傳代次數(shù)不得超過5代 (從菌種保存中心獲得的冷凍干燥菌種為0 代),并采用適宜的菌種保藏技術(shù),以保證試驗菌株的生物學(xué)特性。

      菌液制備(以大腸埃希菌為例)

      菌液制備方法 取1環(huán)大腸埃希菌新鮮TSA斜面培養(yǎng)物接種至胰酪大豆胨液體培養(yǎng)基(TSB)中,30~35℃培養(yǎng)18~24小時。

      菌液稀釋制備 分別取培養(yǎng)液 1ml加pH7.0無菌氯化鈉-蛋白胨溶液,采用10倍遞增稀釋法,稀釋至10-5~10-7,制成每1ml含菌數(shù)10~100cfu的菌懸液。

      驗證過程(大腸埃希菌) 試驗組:取1:10的供試液10ml加入濾杯,再加入1ml不大于100cfu的大腸埃希菌菌懸液過濾。最后再用300mlpH7.0氯化鈉-蛋白胨緩沖液沖洗濾膜(每次100ml,沖3次)。過濾結(jié)束后,將濾膜接種至裝有100mlTSB的無菌錐形瓶中。于30~35℃培養(yǎng)18-24h,觀察結(jié)果。取上述培養(yǎng)物1ml 接種至100ml麥康凱液體培養(yǎng)基(MCB)中,42~44℃培養(yǎng)24小時,取麥康凱液體培養(yǎng)物劃 線接種于麥康凱瓊脂培養(yǎng)基(MCA)平板上30~35℃培養(yǎng)18小時。

      菌液對照組:取10mlpH7.0 無菌氯化鈉-蛋白胨緩沖液代替供試品,其余操作同試驗組。

      陰性對照組:取10mpH7.0 無菌氯化鈉-蛋白胨緩沖液代替供試品,以稀釋液代替菌液同試驗組操作。

      陰性對照組要求 試驗組、菌液對照組應(yīng)檢出大腸埃希菌,陰性對照組應(yīng)未檢出試驗菌,驗證試驗有效,否則應(yīng)消除供試品的抑菌活性重新驗證。至少應(yīng)進(jìn)行3次獨立平行試驗。陰性菌對照組不得檢出陰性對照菌。若試驗組檢出試驗菌,照該供試液制備方法和控制菌檢查法進(jìn)行該供試品控制菌的檢查。

      未檢出試驗菌處理 若試驗組未檢出試驗菌,應(yīng)采用自然沉降法、培養(yǎng)基稀釋法、離心沉淀集菌法、薄膜過濾法、中和法等方法或聯(lián)合使用這些方法消除供試品的抑菌活性,并重新進(jìn)行方法驗證。

      再驗證

      藥品組分變化 當(dāng)藥品的組分發(fā)生改變可能影響檢驗結(jié)果時,需要進(jìn)行再驗證。

      檢驗條件調(diào)整 當(dāng)驗證時檢驗條件發(fā)生改變可能影響檢驗結(jié)果時,需要進(jìn)行再驗證。


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